血清使用過程中應注意的問題
關于血清使用的幾點建議
1、血清必須貯存-20℃,如存放于4℃,請勿超過兩周,對于某些單位一次無法用完一瓶,可在無菌條件下将其40-45ml分裝于無菌50ml離心管中(或血清瓶中),由于血清解凍時體積會增加10%,必須預留此膨脹體積的空間,否則易發生污染或容器凍裂的情形。
2、一般公司所提供的血清一般為200ml和500ml裝量,因此建議在使用中宜采取逐步解凍的方法解凍血清:-20℃→4℃冰箱或冷庫溶解24小時→室溫下全溶後再分裝,一般以50ml無菌離心管中分裝40-45ml。使用過程中要特别注意,必須規則地将血清搖晃均勻,小心勿造成氣泡,使溫度與成分均一,減少沉澱的發生。勿直接由-20℃放置至37℃環境下解凍,因為溫度改變太大,溶易造成蛋白質凝結而産生沉澱。
3、血清的滅活(heat-inactivation)一般是指56℃,30分鐘水浴加熱已完全解凍的血清,加熱過程中必須規則地搖晃均勻。此處理的目的是使血清中的補體成分(complement)去活化。但是,經過滅活處理的血清會因而造成沉澱的顯著增多,且會影響血清的品質。所以,有的公司所生的細胞培養用牛血清不做滅活處理,由客戶自行選擇。而診斷試劑用血清在除菌過濾前進行過滅活處理。
4、在使用血清的時候,勿将血清留置于37℃太久,血清會變得混濁,同時血清中許多較不穩定的成分會因而受到破壞,影響血清的品質。
5一般我們在使用過程中是先過濾培養基,再加血清,勿直接過濾血清。
6、血清的沉澱物
1.凝絮物:其産生的原因有多種,但普遍的原因是血清中的脂蛋白(lipoprotein)變形及解凍後血清中存在的纖維蛋白(fibrin)造成,這些凝絮沉澱物不會影響血清本身的品質。除非必須,如果您想減少這些沉澱物,建議可用離心3000rpm,5min去除,或離心後取上清液加入培養基中一起除菌過濾。
2.顯微鏡下觀察“小黑點”,通常經過熱處理的血清,沉澱物的形成會顯著增多。有些沉澱物在顯微鏡下觀察像是“小黑點”,常會誤認為是血清遭受污染(如黑膠蟲),而将血清放置在37℃中欲培養此“微生物”,但37℃環境下,又會使此沉澱物增多,更會誤認為微生物的增殖,但以培養細菌的培養基檢測,又沒有污染。一般而言,此小黑點不會影響細胞的生長。
血清質量的決定因素
1、關于牛種
血清質量與牛種沒有必然的聯系,但有其先天條件。
首先,澳大利亞、新西蘭的牛源之所以被國際公認為最好,原因是這些國家的牛源是“無污染”的,“無污染”的實際含義是:病毒等外源因子污染較少。至于美國,由于其國内出現了瘋牛病,其形象由此受到挑戰。這種血清安全性的觀念在發達國家認知度較高,而在我國還不夠重視。
其次,牛所能獲得的營養對血清質量有影響。在我國,由于飼養條件的不同,不同地區産的血清質量是有差異的。
2、質量标準件的問題
我國對人用生物制品生産所用的牛血清制定了國家标準,載于《中國生物制品主要原輔材料質控标準》2000年版,此标準已接近于國外胎牛血清的有關标準。内毒素:國家标準件為不高于10Eu/ml,内控标準件為不高5Eu/ml或10Eu/ml.國家标準之外的質控指标還有:免疫球蛋白、牛腹瀉病毒(BVDV)抗體、激素、和牛源安全性驗證等。
3、牛血清的命名和選擇
一般公司對細胞培養用牛血清的命名分二類:胎牛血清和小牛血清。對于一般的細胞系,小牛血清可以培養的很好。
關于牛血清白蛋白的生産工藝
牛血清白蛋白的制備方法有Cohn′s法、鹽析法、熱變性法等多種工藝。不同的生産工藝其産品的名稱、質量指标、應用領域等各不相同。
其中Cohn′s法設備、工藝要求比較高,相對應的生産成本較高,但産品質量較好。牛血清組份V(FrationV)就是由Cohn′s法制備的。一般白蛋白純度96-99%、外觀潔白、結晶性狀好、1%蛋白水溶液PH7.0±0.2,再根據不同的應用分成低内毒素、低脂肪酸等等的不産品,主要應用于細胞培養領域的無血清培養基中。鹽析法因生産周期長,純度低和産品聚合體高、穩定性低等缺陷已很少應用。
目前國内應用比較普遍的是熱變性法,結合較先進的超濾生産工藝,其工藝要求相對較低,制備成本低,其缺點是目前應用領域比較單一,僅供免疫診斷試劑使用。
總結源自:>謝謝分享,請注明來源好帖,頂一下好帖。我說怎麼無論怎麼小心都會有黑點,而且每次PBS洗完後沒有,第二天又有了,終于得到答案了,謝謝了很好,不錯,就是多需要你這樣的人了!liuzeyi2002wrote:
5一般我們在使用過程中是先過濾培養基,再加血清,勿直接過濾血清。
是過濾培養基(1640),在加血清,然後再過濾
還是加入血清後就不用過濾了啊
我有我配的凍存液(1640,小牛血清20%,DMSO10%),放在-4度保存好還是-20度保存好啊
謝謝,本人最近要凍一批細胞,每次配的話很麻煩,先配好然後直接用,不知道這樣可行iahnilwrote:
是過濾培養基(1640),在加血清,然後再過濾
還是加入血清後就不用過濾了啊
我有我配的凍存液(1640,小牛血清20%,DMSO10%),放在-4度保存好還是-20度保存好啊
謝謝,本人最近要凍一批細胞,每次配的話很麻煩,先配好然後直接用,不知道這樣可行
你的問題:1.我們是過濾培養基,再加滅活的血清。然後就不用過濾了.
2.你凍存液的配方是最老的,7:2:1吧。一般可以這樣配。如果細胞珍貴的話,可以按血清:DMSO,9:1配凍存液。凍存液最好現配現用,!謝謝樓上的!
養細胞的過程中,遇到問題的時候還是要從最基本的問題考慮起,例如樓上說的:顯微鏡下觀察“小黑點”,通常經過熱處理的血清,沉澱物的形成會顯著增多。有些沉澱物在顯微鏡下觀察像是“小黑點”,常會誤認為是血清遭受污染(如黑膠蟲),而将血清放置在37℃中欲培養此“微生物”,但37℃環境下,又會使此沉澱物增多,更會誤認為微生物的增殖,但以培養細菌的培養基檢測,又沒有污染。一般而言,此小黑點不會影響細胞的生長。
還有就有的細胞本身特性,生長繁殖快,不宜貼壁,比如一些高轉移的腫瘤細胞,往往在培養過程中死細胞,脫落細胞比較多;或者血清的原因等,也會導緻細胞脫落死亡,培養液渾濁,有的戰友可能就會誤認為是污染了。liuzeyi2002wrote:
2.你凍存液的配方是最老的,7:2:1吧。一般可以這樣配。如果細胞珍貴的話,可以按血清:DMSO,9:1配凍存液。凍存液最好現配現用,!
我凍存的是兒童白血病初診斷時骨髓提取的單個核細胞,老闆讓先凍着,也沒想好做什麼!積累資源
能否給點建議,非常感謝一個簡單方法判斷是否有污染,那就是打開培養瓶蓋聞一聞,如果有異味,那就絕對污染了liuzeyi2002wrote:
5一般我們在使用過程中是先過濾培養基,再加血清,勿直接過濾血清。
請問:1直接過濾血清有什麼弊端?
2您用的是進口的血清吧?我們實驗室用的國産血清,不過濾對細胞有影響,可能是因為血清中的有害物質。看了上述各位占有的帖子,我想的是有兩個問題:
1,liuzeyi2002戰友說顯微鏡下觀察“小黑點”,并沒有指出小黑點是什麼。請問,那些小黑點到底是什麼?為什麼會出現?是購買血清時就有的(即血清生産過程中就出現),還是購買後存放實驗室的保存原因??
2,ahdongyh戰友說的,在培養過程中脫落細胞比較多;培養液渾濁,被誤認為是污染。
我在細胞培養過程中也遇到了類似的問題,請問這些是什麼原因??為什麼會出現?
我也認為是被污染了,我的處理是直接把培養物全部丢棄掉!!
感謝您的回答,或者pm我!!學習了,謝謝xiaowen865wrote:
看了上述各位占有的帖子,我想的是有兩個問題:
1,liuzeyi2002戰友說顯微鏡下觀察“小黑點”,并沒有指出小黑點是什麼。請問,那些小黑點到底是什麼?為什麼會出現?是購買血清時就有的(即血清生産過程中就出現),還是購買後存放實驗室的保存原因??
2,ahdongyh戰友說的,在培養過程中脫落細胞比較多;培養液渾濁,被誤認為是污染。
我在細胞培養過程中也遇到了類似的問題,請問這些是什麼原因??為什麼會出現?
我也認為是被污染了,我的處理是直接把培養物全部丢棄掉!!
感謝您的回答,或者pm我!!
我有有這樣的問題,覺得是污染,肉眼看見懸浮的小球一樣的顆粒學習了,謝謝2、一般公司所提供的血清一般為200ml和500ml裝量,因此建議在使用中宜采取逐步解凍的方法解凍血清:-20℃→4℃冰箱或冷庫溶解24小時→室溫下全溶後再分裝,一般以50ml無菌離心管中分裝40-45ml。使用過程中要特别注意,必須規則地将血清搖晃均勻,小心勿造成氣泡,使溫度與成分均一,減少沉澱的發生。勿直接由-20℃放置至37℃環境下解凍,因為溫度改變太大,溶易造成蛋白質凝結而産生沉澱。
關于這一點我不認同,應該是直接由-20℃放置至37℃水浴解凍,我沒有看你提供的鍊接.不知你來源是否權威.
我們都是用水浴,很好.而且你可能不作臨床不知道臨床是如何應用的,在輸血科,冰凍血漿就是水浴解凍的.當然兩者不同,但是血漿成份更複雜.
為了最好的保存活性物質,要用最快的速度解凍.
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